POTENCIAL DE BIOCONTROLE Trichoderma spp CONTRA Macrophomina phaseolina DE FEIJÃO- CAUPI

Luciana Gonçalves de Oliveira, Mayara Goes Kettner, Maria Luiza Souza Lima, Emmanuelle Rodrigues Araújo, Anderson Rodrigo da Silva, Antonio Félix da Costa

Resumo


O feijão-caupi possui grande importância por fazer parte do hábito alimentar da população e por ser uma das principais fontes de renda e emprego. As doenças estão entre os fatores limitantes da produtividade do feijão-caupi, uma das principais enfermidades que acometem ao feijão-caupi é causada pelo fungo Macrophomina phaseolina. Em busca de um desenvolvimento agrícola sustentável, o uso de agentes de controle biológico é considerado uma alternativa viável. Diante disso, objetivo foi avaliar o potencial de biocontrole in vivo e in vitro de Macrophomina phaseolina isolados de plantas do feijão-caupi por isolados de Trichoderma sp. O bioensaio foi realizado com sete isolados de Trichoderma in vitro utilizando a metodologia de pareamento. Todos os antagonistas testados apresentaram atividade antagônica sobre o crescimento micelial de M. phaseolina. Para o bioensaio in vivo, realizado em casa de vegetação, cinco isolados apresentaram atividade biocontroladora sobre o patógeno, indicando que Trichoderma sp possui potencial para o manejo da podridão-cinzenta-do-caule.


Palavras-chave


antagonismo, controle biológico, podridão do cinzenta do caule, Vigna unguiculata

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Referências


ALMEIDA, A. L. G.; ALCÂNTARA ROSA, M. C. M.; NOBREGA, R. S. A.; LEITE, L. F. C.; SILVA, J. A. L. Produtividade do feijão-caupi cv BR 17 Gurguéia inoculado com bactérias diazotróficas simbióticas no Piauí. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v.5, n.3, p.364-369, 2010.

BELL, D. K.; WELLS, H. D.; MARKHAM, C. R. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology, Saint Paul, v. 72, n. 4, p. 379-382, 1982.

BORGES, E.P.; ANDRADE, D.F.A.A.; BORGES, R.A. Doenças da soja e seu controle. In: Borges, E.P. Pesquisa, tecnologia, e produtividade: soja/ milho 2014/2015. Chapadão do Sul: Fundação Chapadão, 2015. cap.11, p.96-108.

BRASIL, Companhia Nacional de Abastecimento. Acompanhamento da safra brasileira – Grãos. Safra 2020/21. V. 8 – N.1 Primeiro Levantamento, Brasília, p. 1-77, outubro 2020. Disponível em < https://www.conab.gov.br/info-agro/safras/graos/boletim-da-safra-de-graos> Acesso em: 08 de março de 2021.

BRASIL. Companhia Nacional de Abastecimento. Acompanhamento das safra brasileira - Grãos: Safra 2019/2020 – N. 12– Décimo segundo levantamento, Brasília, p. 1-68, setembro 2020. Disponível em < https://www.conab.gov.br/info-agro/safras/graos/boletim-da-safra-de-graos> Acesso em: 08 de março de 2021.

BRITO, J. P.C. et al. Peptaibols from Trichoderma asperellum TR 356 strain isolated from Brazilian soil. Springer Plus, v. 3, n. 1, p. 600-610, 2014.

CUBILLA-RÍOS, A. A. et al. Antibiosis de proteínas y metabolitos en especies de Trichoderma contra aislamientos paraguayos de Macrophomina phaseolina. Agronomia Mesoamericana, v. 30 n. 1, p. 63-77, 2019. Doi: 10.15517/am.v30i1.34423

FARR, D. F. et al. Fungus-host distribution database. 2010.

FREIRE FILHO, F.R. et al. Feijão-caupi no Brasil: produção, melhoramento genético, avanços e desafios. Teresina: Embrapa Meio-Norte, 2011.84 p

GHAZANFAR, M. U. et al. Trichoderma as potential biocontrol agent, its exploitation in agriculture:a review. Plant Protection, v. 2, p: 109-135. 2018.

GODOY, C.V. et al. Doenças da soja. In: Amorim, L.; Rezende, J. A. M.; C.; Benjamim Filho, A.; Camargo, L. E. A. Manual de fitopatologia: doenças de plantas cultivadas. Cap. 67. P. 657-676. V.2. Editora Agronômica Ceres Ltda. Ouro Fino-MG. 2016.

GUPTA, G. K.; SHARMA. S. K.; RAMTEKE, R. Biology, epidemiology and management of the pathogenic fungus Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. with special reference to charcoal rot of soybean (Glycine max (L.) Merrill). Journal of Phytopathology, v. 160, p. 167- 180, 2012.

HEWEDY, et al. Phylogenetic Diversity of Trichoderma Strains and Their Antagonistic Potential against Soil-Borne Pathogens under Stress Conditions. Biology, v. 9, p. 189, 2020.

IQBAL, U.; MUKHTAR, T. Evaluation of Biocontrol Potential of Seven Indigenous

Trichoderma Species against Charcoal Rot Causing Fungus, Macrophomina phaseolina. Gesunde Pflanzen, v. 72, p. 195–202, 2020. https://doiorg.ez16.periodicos.capes.gov.br/10.1007/s10343-020-00501-x

ISAIAS, et al. Ação antagônica e de metabólitos bioativos de Trichoderma spp. contra os

patógenos Sclerotium rolfsii e Verticillium dahliae. Summa Phytopathologica, v.40, n.1,

p.34-41, 2014.

ISLAM, M.S. et al. Tools to kill: Genome of one of the most destructive plant pathogenic fungi Macrophomina phaseolina. BMC Genomics, v. 13, p. 493-509, 2012.

KAUR, S. et al. Emerging phytopathogen Macrophomina phaseolina: biology, economic importance and current diagnostic trends. Critical Reviews in Microbiology, v. 38, n. 2, p.136-151, 2012. DOI: 10.3109 / 1040841X.2011.640977

KHALEDI, N.; TAHERI, P. Biocontrol mechanisms of Trichoderma harzianum against soybean charcoal rot caused by Macrophomina phaseolina. Journal of Plant Protection Research, 56(1), pp.21-31. 2016. https://doi.org/10.1515/jppr-2016-0004

KHALILI, et al. Optimization of cultivation conditions in banana wastes for production of

extracellular β-glucosidase by Trichoderma harzianum Rifai efficient for in vitro inhibition

of Macrophomina phaseolina , Biotechnology & Biotechnological Equipment, v.31, n. 5, p.

-934, 2017, DOI: 10.1080 / 13102818.2017.1342562

KHAN, M. R. et al. Management of root-rot disease complex of mungbean caused by Macrophomina phaseolina and Rhizoctonia solani through soil application of Trichoderma spp. Crop Protection, v.119 p.24-29,2019. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2019.01.014

KIM, Y. C.; JUNG, H.; KIM, K. Y.; PARK, S. K. An effective biocontrol bioformulation against Phytophthora blight of pepper using growth mixtures of combined chitinolytic bacteria under different field conditions. European Journal of Plant Pathology, v. 120, p. 373- 382, 2008.

LIMA, L. R. L.;NORONHA, M. A.; SILVA, K. J. D.; LOPES, Â. C. A.; ROCHA, M. M. Influência de metodologia de inoculação e da concentração de inóculo de Macrophomina phaseolina no desenvolvimento da podridão-cinzenta-do-caule em feijão-caupi. In: III Congresso Nacional de Feijão-caupi, 2013, Recife. Anais do III Congresso Nacional de Feijão-caupi, 2013

MENDIBURU, F. Agricolae: Statistical Procedures for Agricultural Research. R package version 1.2-6.2017 Disponível em . Acesso em 15/03/2021.

MENEZES, M.; SILVA, D. M. W. Guia prático para isolamentos de fungo fitopatogênicos .Recife,PE: UFRPE, 1997. 120p

MERTZ, L. M.; HENNING, F. A.; ZIMMER, P. D. Bioprotetores e fungicidas químicos no tratamento de sementes de soja. Ciência Rural, v. 39, n. 1, p. 13-18, 2009.

MOHIDDIN, F.A.; KHAN, M.R.; KHAN, S. M. Why Trichoderma is considered super hero (super fungus) against the evil parasites? Plant Pathol J , v.9, n. 3, p. 92-102, 2010.

NASCIMENTO, et al. Sobrevivência de estrutura de resistência de Macrophomina phaseolina e Sclerotium rolfsii em solo tratado biologicamente. Revista Agro@mbiente online, [S.l.], v. 10, n. 1, p. 50-56, 2016. . Disponível em: . Acesso em: 28 oct. 2020.

doi:http://dx.doi.org/10.18227/1982-8470ragro.v10i1.2947

PARMAR, R.G.; PATEL, P.S. Efficacy of bioagents against Macrophomina phaseolina causing root rot of soybean in vitro. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, v.9, SP6:196-198. 2020.

PEDROSO, C. Incidência, controle de doenças de feijão-vagem e anatomia e histoquímica de Phaseolus vulgaris e Vigna unguiculata resistentes e suscetíveis ao oídio (Erysiphe polygoni). 135 f., il. Tese (Doutorado em Fitopatologia)—Universidade de Brasília, Brasília, 2012.

RAMOS, H. M. M. et al. Estratégias ótimas de irrigação do feijão-caupi para produção de grãos verdes. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 47, n. 2, p. 576–583, 2012.

ROSOLEM, C. Nutrição e adubação do feijoeiro. Piracicaba: Ed. POTAFOS, 1987. 93p (Boletim Técnico, 8)

SILVA, A. C. da, et al. Diagnóstico da produção de feijão-caupi no nordeste brasileiro. Revista da Universidade Vale do Rio Verde, v. 16, n. 2, 2018.

EDIC-PAP, S. ZUPUNSKI, V. Efficacy of Trichoderma spp. against Common Fungal Pathogens. Ratarstvo i povrtarstvo, v. 54, n. 3 p. 104 – 109,2017. https://doi.org/10.5937/ratpov54-14254

SINGH, S.; CHAND, H.; VARMA, P.K. Screening of bioagents against root rot of mung

bean caused by Rhizoctonia solani. Legum Res, v. 31, p. 75–76, 2008.

UPMANYU, S; GUPTA, S.K.; SHYAM, K.R. Innovative approaches for the management

of root rot and web blight (Rhizoctonia solani) of french bean. J Mycol Plant Pathol, v. 32,

p.317–331, 2002.

TANCIC-ZIVANOV, S.; RADIVOJE, J.; LALOSEVIC, M.; ZIVANOV, D.; MEDIC-PAP, S. ZUPUNSKI, V. Efficacy of Trichoderma spp. against Common Fungal Pathogens. Ratarstvo i povrtarstvo, v. 54, n. 3 p. 104 – 109,2017. https://doi.org/10.5937/ratpov54-14254

VINALE, et al. . Trichoderma-plant-pathogen interactions. Soil Biology & Biochemistry,

v.40, n. 1, p. 1-10, 2008. doi: 10.1016/j.soilbio.2007.07.002




DOI: https://doi.org/10.12661/pap.2021.003

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